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谷胱甘肽親和介質(zhì)——層析介質(zhì)優(yōu)選西寶生物

來源:作者:人氣:-發(fā)表時間:2015-10-16 09:47:00【

  GST親和介質(zhì)是專門設(shè)計用于分離純化谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)標簽蛋白、其它來源的谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶以及和谷胱甘肽具有親和作用的蛋白的親和層析介質(zhì)。GST親和層析具有操作條件溫和、特異性強的特點,有利于蛋白的活性保持和高純度目標蛋白的快速制備,通常一步親和層析即可得到高純度的目標蛋白。

  西寶生物谷胱甘肽親和介質(zhì)以高交聯(lián)的瓊脂糖凝膠為基質(zhì),以谷胱甘肽為配基,通過間隔臂長短和配基密度的合理調(diào)控,產(chǎn)品具有載量高(~10 mg GST融合蛋白/ml介質(zhì))、特異性強、物理和化學穩(wěn)定性良好、使用壽命長、易放大的特點,是研發(fā)和生產(chǎn)的理想選擇。
一、產(chǎn)品特性
參數(shù)
指標
基質(zhì)
4%交聯(lián)瓊脂糖凝膠
配基
谷胱甘肽
形狀
球形
介質(zhì)平均粒徑
90 μm (45-165)
配基密度
~8 mg GSH/mL   wet gel
動態(tài)載量

~10 mg GST融合蛋白/mL   wet gel (Mr 42 kDa)

~3.5 mg GST(大鼠肝臟)/mL   wet gel
流速高達(25℃)
450 cm/h
推薦流速
<150 cm/h
耐壓高達
0.3 MPa (3 bar)
pH穩(wěn)定性
3~12
化學穩(wěn)定性
在常用的水溶性緩沖液中均穩(wěn)定,在70%乙醇、30%異丙醇、6M鹽酸胍、1M乙酸(pH 4)中均穩(wěn)定
物理穩(wěn)定性
溶液的pH或離子強度影響介質(zhì)的體積變化率<2%
保存
4-8 (20%乙醇)

 

二、應(yīng)用范圍

西寶生物谷胱甘肽親和層析介質(zhì)廣泛用于GST融合蛋白、其它來源的谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶以及和谷胱甘肽具有親和作用的蛋白的分離純化。實際操作中可采用靜態(tài)吸附、重力柱、離心柱、層析柱等模式進行蛋白質(zhì)的分離純化,其中柱層析操作自動化程度高、分離純化效果好、重現(xiàn)性好,應(yīng)用較為廣泛。

 
三、操作步驟
柱層析操作通常包括裝柱、平衡、進料、淋洗、洗脫、再生等步驟(以5.0 × 1.6 cm I.D.,柱高5 cm,柱體積10 ml為例(層析柱(空柱)尺寸:20.0 × 1.6 cm I.D.)。平衡:用5-10CV的平衡緩沖液(20-50 mM PB或Tris/HCl,pH 7.4-8.0,可加入0.15 M NaCl抑制非特異吸附)平衡層析柱,至流出液電導(dǎo)和pH不變(與平衡液一致)。
  1. 裝柱:取適量介質(zhì)放置于燒杯中,勻漿濃度約為50-60%,攪拌均勻后備用(介質(zhì)和緩沖液均處于純化時所需的溫度);清洗層析柱,排出柱底部轉(zhuǎn)接頭篩網(wǎng)/墊片上的氣泡,擰緊底部的轉(zhuǎn)接頭,加入適量純水至約1 cm高度;介質(zhì)攪拌均勻后用玻璃棒緊靠柱子內(nèi)壁引流,將介質(zhì)勻速、連續(xù)地加入到層析柱中(這可以減少氣泡的產(chǎn)生);介質(zhì)沉降5-30 min(上層溶液澄清)后小心裝上柱子頂部的轉(zhuǎn)換接頭(避免殘留氣泡和破壞膠面),然后依次以1、2 mL/min的流速用純水(或平衡緩沖液)壓柱子各2min,最后用5 mL/min的流速壓柱子3-5 min至膠面穩(wěn)定不變(可在界面處做記號便于后期觀察膠面變化情況),將頂部的轉(zhuǎn)換接頭擰松,緩慢向下移動至膠面后擰緊轉(zhuǎn)換接頭。
  2. 平衡:用5CV(柱體積)的平衡緩沖液(50 mM Tris-HCl + 0.15 M NaCl,pH 8.0,)平衡層析柱(添加適當濃度(0.1-0.2 M)的NaCl可抑制蛋白的非特異性吸附,添加適當濃度(1-10 mM)的DTT可提高部分蛋白的穩(wěn)定性和結(jié)合載量),流速為2 ml/min(后續(xù)操作流速均為2 mL/min,操作流速不高于裝柱流速的75%),至流出液電導(dǎo)和pH不變(與平衡液一致)。原位清洗:為了避免不同樣品間的相互干擾,或者當介質(zhì)污染比較嚴重時(反壓增加),需要對介質(zhì)進行在位清洗。
  3. 進料:樣品緩沖液應(yīng)盡可能與平衡液一致。菌體破碎時直接采用平衡緩沖液溶解(1 g菌體對應(yīng)5-10 mL緩沖液);固體樣品可用平衡液溶解配制;低濃度樣品溶液可用平衡液透析;高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。為了避免堵塞層析柱,樣品應(yīng)經(jīng)離心或微濾(0.45μm)處理。進料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中目標蛋白的含量計算(介質(zhì)的動態(tài)載量與流速密切相關(guān),較低流速有利于提高載量)。
  4. 淋洗:上樣完畢后繼續(xù)用平衡緩沖液淋洗至基線。
  5. 洗脫:用洗脫緩沖液(50 mM Tris-HCl+10 mM GSH,pH 8.0,GSH濃度需要根據(jù)目標蛋白的結(jié)合力進行適當調(diào)整,GSH易被氧化,現(xiàn)用現(xiàn)配,)洗脫,收集流出液。
  6. 原位清洗:介質(zhì)使用數(shù)次(具體次數(shù)與原料的種類和來源及實驗要求有關(guān))后,介質(zhì)上會有部分沉淀物、變性蛋白及非特異性吸附的蛋白,導(dǎo)致介質(zhì)結(jié)合能力的下降,需要對介質(zhì)進行在位清洗(100 cm/h)。
(1)去除沉淀物及變性蛋白,可用2 CV 6 M鹽酸胍清洗,然后立即用5 CV中性PBS緩沖液平衡至中性。

(2)去除疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白和脂類物質(zhì),可用3-4 CV的70%乙醇或30%異丙醇清洗(20 min以上),并用3-5 CV的純水沖洗。

(3)也可用2 CV 0.01-0.1 M的NaOH清洗,然后立即用5 CV中性PBS緩沖液平衡至中性(優(yōu)先采用方法(1)和(2)清洗)。
其它注意事項:在裝柱、使用和保存柱子的時候,要避免柱子流干,氣泡進入。
 
四、具體應(yīng)用實例
實例一:蛋白樣品:GST融合蛋白(菌體破碎:按照1 g菌體對應(yīng)10 ml Buffer A配置菌體溶液,冰水浴中超聲破碎30min,超聲3S/停3S)、離心(1000 g,4度,15 min),分子量約為42kDa);

層析介質(zhì):GST QZT 4FF介質(zhì)(2.55 cm × 1.0 cm I.D., CV=2.0 mL);

對照介質(zhì)(2.55 cm × 1.0 cm I.D., CV=2.0 mL, 國際領(lǐng)先品牌);

Buffer A: 50 mM Tris-HCl+0.15M NaCl, pH 8.0;

Buffer B: 50 mM Tris-HCl+10 mM GSH (GSH易氧化,現(xiàn)配現(xiàn)用);

上樣量:10 mL;

流速:0.5 mL/min。

實例二:蛋白樣品:GST融合蛋白(菌體破碎(按照1 g菌體對應(yīng)10 ml Buffer A配置菌體溶液,冰水浴中超聲破碎(30min,超聲3S/停3S))、離心(1000 g,4度,15 min),分子量約為42kDa);

層析介質(zhì):GST QZT 4FF介質(zhì)(2.55 cm × 1.0 cm I.D., CV=2.0 mL);

對照介質(zhì)(2.55 cm × 1.0 cm I.D., CV=2.0 mL, 國際領(lǐng)先品牌);

Buffer A: 50 mM Tris-HCl+0.15M NaCl, pH 8.0;

Buffer B: 50 mM Tris-HCl+10 mM GSH (GSH易氧化,現(xiàn)配現(xiàn)用);

上樣量:10 mL;
流速:0.5 mL/min。
 
五、特色服務(wù)
(1)提供介質(zhì)篩選及工藝開發(fā)的咨詢。
(2)接受客戶委托開發(fā)各種分離介質(zhì)和分離工藝。
(3)按客戶要求提供各種規(guī)格的預(yù)裝柱。
(4)為客戶提供專業(yè)的售前和售后服務(wù)。
 
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