離子交換層析介質——層析介質優選西寶生物
離子交換層析是生物大分子分離純化常用的方法。以瓊脂糖凝膠為基質的離子交換層析介質保留了天然多糖化合物極好的親水性及孔結構,對生物活性大分子具有很好的相容性,特別適用于蛋白質、酶、多糖、核酸、質粒等的分離純化。西寶生物離子交換層析介質以自制的瓊脂糖凝膠為基質,以-(CH2)2N(C2H5)2、-CH3N(CH3)3、-CH2COO-、-SO3-為配基,具有很好的化學和物理穩定性。
表1 離子交換疏水層析介質的理化性質和產品特性
參數 |
指標 |
|
功能基及交換容量 |
DEAE |
0.11-0.16 mmol/mL wet gel |
Q |
0.18-0.25 mmol/mL wet gel |
|
CM |
0.09-0.13 mmol/mL wet gel |
|
SP |
0.18-0.25 mmol/mL wet gel |
|
動態載量 |
DEAE |
110 mg HSA/mL wet gel |
Q |
120 mg HSA/mL wet gel |
|
CM |
50 mg RNase/mL wet gel |
|
SP |
70 mg RNase/mL wet gel |
|
形狀 |
球形 |
|
介質平均粒徑 |
90 μm (45-165) |
|
流速高達( |
|
|
建議流速 |
< |
|
耐壓高達 |
0.3 MPa (3 bar) |
|
pH穩定性 |
3-13(長時間);2-14(短時間) |
|
化學穩定性 |
室溫下 |
|
物理穩定性 |
溶液的pH或離子強度影響介質的體積變化率<2% |
|
保存 |
4-30℃(20%乙醇) |
層析操作通常包括裝柱、平衡、進料、淋洗、洗脫、再生等步驟。具體的操作方法如下(以20 cm×1.6 cm I.D., H=7.5 cm, CV=15 mL為例):
- 平衡:用5~10CV的平衡緩沖液(Buffer A,如20 mM PB, pH7.0,具體的緩沖體系應根據目標蛋白的穩定性和等電點、離子交換介質的種類進行篩選和優化)以2-5mL/min的流速平衡層析柱,至流出液電導和pH不變(與平衡液一致)。
- 進料:樣品緩沖液應盡可能與平衡液一致。固體樣品可用平衡液溶解配制;低濃度樣品溶液可用平衡液透析或添加相應量的鹽;高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。為了避免堵塞層析柱,樣品應經離心或微濾(0.45 μm)處理。進料量根據介質的載量和料液中目標蛋白的含量計算。
- 淋洗:以2-5 mL/min的流速上樣,并繼續用平衡緩沖液淋洗至基線。
- 洗脫:用洗脫緩沖液(20 mM PB+1 M NaCl, pH7.0,也可采用pH梯度洗脫)以2-5mL/min的流速洗脫(可采用線性梯度洗脫或階越梯度洗脫),收集流出液。
- 再生:每次層析之后可用1-2 M NaCl清洗層析柱,除去強結合的蛋白。
-
原位清洗:介質使用數次(具體次數與原料的種類和來源及實驗要求有關)后,需要對介質進行在位清洗:
(1)對于通過離子鍵強結合的蛋白,可用2 M NaCl以1-2 mL/min的流速反向清洗10-15 min;(2)對沉淀蛋白、疏水性結合的蛋白、脂蛋白,可用1 M NaOH以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV;(3)對強疏水性結合的蛋白、脂蛋白和脂類物質,可用70%乙醇或30%異丙醇以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV(使用高濃度的有機溶劑時,為了避免產生氣泡,應采用逐步增加有機溶劑濃度的方法)。 - 保存:4-30℃下20%乙醇中保存(4℃下有利于長期保存);層析柱中的介質可用20%的乙醇沖洗后保存于4-30℃。
- 其它注意事項:在裝柱、使用和保存柱子的時候,要避免柱子流干或密封不嚴,防止氣泡進入。
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